细胞转染效率和病毒滴度如何提高来源:公众号 ![]() 细胞转染效率和病毒滴度如何提高? ---实验操作和分析报告分享 一、细胞转染测试试剂材料和条件:a、目的细胞:Mono-293TT-Gao细胞(单克隆高转染高滴度的人胚肾细胞)。 b、目的质粒:SC-mKate2-Puro-Vector质粒,分别 1.5ug和3ug;浓度大于500ng/ul。 c、辅助质粒:PLP1质粒、PLP2 质粒 和PVSV-G质粒,分别0.5ug和1ug。 d、转染体系:6孔板单孔+高效多能细胞转染试剂TransVB-Hi。 二、细胞转染操作步骤:细胞转染详细操作步骤,请点击跳转细胞转染慢病毒包装操作步骤。 三、转染测试结果和数据解读(图2和3):A、细胞转染效率曲线 ![]() ![]() B、细胞转染时间间隔照片(图4、5和6): ![]() ![]() ![]() C、细胞转染数据数据解读: 在细胞数目和状态、细胞转染体系(H-DMEM+4质粒转染体系)、操作方法(滴加)和转染试剂剂量(10ul TransVB-Hi转染试剂/单孔))一致的前提下,分别按照目的质粒1.5ug和3ug采用4质粒体系转染Mono-293TT-Gao细胞,转染6h后换液。 a、转染细胞6h(曲线坐标轴上的第一个时间),InCucyte细胞成像可见:两种质粒转染体系均有非常少的红光荧光表达,表明细胞转染成功,可换液。 b、细胞转染24h(曲线坐标轴上的第二个时间),InCucyte细胞成像可见:两种质粒转染体系均有较多的红光荧光表达(均大于50K/Well),两种体系转染效率差异不明显。 c、细胞转染24h+6h(曲线坐标轴上的第三个时间),InCucyte细胞成像可见:两种质粒体系均有大量的红光荧光表达(均大于125K/Well),且1.5ug质粒转染体系表达红色荧光的细胞数目为3ug质粒转染体系的2倍以上,细胞转染效率差异非常明显。 d、细胞转染48h(曲线坐标轴上的第四个时间),InCucyte细胞成像可见:两种质粒转染体系均有大量的红光荧光表达(大于100K/Well),且1.5ug质粒转染体系表达红色荧光的细胞数目为3ug质粒转染体系的1.5倍以上,细胞转染效率差异明显。但整体荧光数目受到未感染细胞及其增殖的遮盖,成像可见的表达红色荧光的细胞数目均减少。 e、细胞转染72h(曲线坐标轴上的第五个时间),InCucyte细胞成像可见:两种质粒转染体系均有大量的红光荧光表达(40-100K/Well),且1.5ug质粒转染体系表达红色荧光数目为3ug质粒转染体系的1倍左右,细胞转染效率差异明显。但整体荧光数目受到未感染细胞及其增殖的遮盖,成像可见的表达红色荧光的细胞数目均减少。 综上可见:在细胞数目和状态、细胞转染体系、操作方法和转染试剂剂量一样的前提下,1.5ug质粒转染体系比3ug质粒转染体系转染效率高2倍以上。产生的慢病毒,同等剂量下分别感染小鼠心肌细胞(HL-1)和人白血病T淋巴细胞(J.RT3-T3.5-Jurkat),1.5ug质粒转染体系产生的慢病毒感染效率更高。 总之,在稳定的细胞转染体系内,降低目的质粒的总质量,可提高细胞转染效率,从而提高慢病毒的滴度。
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